動物細(xì)胞的分離及凍存、復(fù)蘇為了進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng),首先要從生物體去的細(xì)胞,目前獲取細(xì)胞的方法有兩種,即離心分離法和消化分離法。
1、離心分離法
離心分離法主要用從含有細(xì)胞的體液如血液、羊水、腹腔水中分離細(xì)胞。此時(shí)一般用800-1000r/min的速度離心5-10min即可。離心速度過高或時(shí)間過長,易擠壓細(xì)胞使之受傷或死亡。
2、消化分離法
消化分離法是先從生物體取來的組織塊,將其剪碎,并用消化液將其笑話,使組織松散呈細(xì)胞懸液,然后用緩沖液洗滌、離心、去除殘留的消化液而獲得所需的細(xì)胞。
常用的笑話液有胰蛋白酶、乙二胺四乙酸(EDTA)、或胰酶-檸檬酸鹽、胰酶-EDTA聯(lián)合使用。目前最常用的集中消化液配制方法如下: 1%胰蛋白酶溶液的配制
稱取胰蛋白酶10g,用少量Hanks液先將胰蛋白酶調(diào)成糊狀,補(bǔ)足Hanks液至1000ml,振搖混勻,置于4℃冰箱內(nèi)過夜,過濾除菌,分裝小瓶,低溫冰箱冰凍保存,同時(shí)取樣做無菌實(shí)驗(yàn)。使用時(shí)用Hanks液稀釋成0.25%或0.125%,并用NaHCO3調(diào)至PH=7.0或偏堿性。
0.02%EDTA溶液的配制
稱取EDTA0.2g,用1000ml Hanks溶液溶解。8磅 15-20min高壓滅菌,分裝小瓶,4涉世度冰箱保存?zhèn)溆,同時(shí)留樣做無菌實(shí)驗(yàn)。
胰酶-檸檬酸鹽配制
胰酶(1:250)2.50g,檸檬酸三鈉2.96g,NaCL6.15g,酚紅(1%)1.5ml,無離子水1L。 用NaOH調(diào)至PH=7.5,過濾除菌,分裝小瓶,并作無菌實(shí)驗(yàn)。
胰酶-EDTA溶液的配制
取1份0.025%胰酶或胰酶-檸檬酸鹽溶液加4份0.02%EDTA溶液構(gòu)成,可先用現(xiàn)配,也可事先配好,分裝低溫保存?zhèn)溆谩?/span>
細(xì)胞的凍存
細(xì)胞和整體生物一樣,當(dāng)溫度降低時(shí),他的代謝也降低,從而大大的延長了他的存活期。因此目前為了保存細(xì)胞,都采用液氮低溫凍存的方法,用該方法細(xì)胞可保存幾年甚至幾十年。在凍存過程中,滲透壓的改變會影響到脂蛋白,使細(xì)胞膜破裂,為了防止電解質(zhì)過分濃縮,可采用某些保護(hù)劑,如甘油和二甲基亞砜。他們的相對分子量低,易于溶解,容易滲入細(xì)胞,在冷凍時(shí),冷凍速度很重要,不能太快也不能太慢。太慢會產(chǎn)生冰晶損傷細(xì)胞,太快不足以是水分排出。一般要求以1℃/min的速度健將為宜。在無定速降溫設(shè)備時(shí),可按如下三種方法處理1 將安瓿放入壁厚為1.5cm的聚乙烯盒內(nèi),然后放入-70℃冰箱內(nèi)2h,在轉(zhuǎn)入液氮。2將安瓿置于4℃冰箱4-5小時(shí)或過夜,在移至-70℃冰箱內(nèi)2小時(shí),在選育液氮莖口1小時(shí)最后浸入液氮。3放在凍存簡易裝置內(nèi),置于液氮罐莖口,離液氮面5-10cm,2-3小時(shí)候浸入液氮。
細(xì)胞凍存中還有幾點(diǎn)注意事項(xiàng)
1、凍存的細(xì)胞需處在良好的營養(yǎng)狀態(tài),故在凍存前一天要換液培養(yǎng)。 2、細(xì)胞密度以1*10六次方或2*10六次方為好
3、配制東村用培養(yǎng)基要與實(shí)際使用一致,另加入保護(hù)劑二甲基亞砜或甘油10%,二甲基亞砜要過濾除菌,不要用高壓蒸汽滅菌。
4、分裝安瓿若用玻璃的安瓿,封口后要檢查其密封性,可將其浸入甲基藍(lán)乙醇溶液,若有裂紋,可見藍(lán)色進(jìn)入安瓿。
5、標(biāo)簽上要寫上細(xì)胞名稱,編號和凍存日期,最好外面再貼一層透明膠紙。
細(xì)胞的復(fù)蘇
復(fù)蘇時(shí),總的要求是要快熔,在實(shí)際操作中應(yīng)注意如下幾點(diǎn)
1、為了防止因玻璃安瓿封口不好,在融化時(shí)滲入的液氮引起安瓿爆炸,在操作中藥注意防護(hù),戴面罩和手套。
2、從液氮罐中取出的安瓿,應(yīng)立即丟入37-40℃的溫水搪瓷杯中(玻璃燒杯,容易爆炸),并膠東加速融化,
3、用乙醇消毒安瓿外表。
4、由于二甲基亞砜對細(xì)胞有一定的毒性,故應(yīng)盡早去除,或?qū)⒓?xì)胞離心,換上新鮮培養(yǎng)基或先將細(xì)胞懸液直接種入培養(yǎng)瓶中(加入10ml培養(yǎng)基),4-6小時(shí)后,代細(xì)胞貼壁后立即換液。
5、隔天觀察細(xì)胞生長情況,再換液一次。
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